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流式細胞儀檢測技術(shù)實(shí)驗

       流式細胞儀(flow cytometer)是一種能夠探測和計數以單細胞液體流形式穿過(guò)激光束的細胞檢測裝置,由于在檢測中使用的細胞標志示蹤物質(zhì)為熒光標記物,因此,用來(lái)分離、鑒定細胞的流式細胞儀有被稱(chēng)為熒光激活細胞分類(lèi)儀,是分離和鑒定細胞群及亞群的一種強而有力的應用工具。


實(shí)驗方法原理

       流式細胞儀的使用一般分為三個(gè)步驟。

       第一,是儀器前階段,包括試劑的準備,細胞制備、細胞的熒光染色;

       第二,是流式細胞儀階段,主要是儀器的操作;

       第三,是結果分析階段。


       實(shí)驗材料 淋巴細胞外周血的白細胞


       試劑、試劑盒: FACS緩沖液PBS疊氮鈉溶液儀器緩沖液FACS清潔液FACS洗凈液


       儀器、耗材: 流式細胞儀


實(shí)驗步驟

一、 細胞和試劑的準備


       1.  細胞樣品:來(lái)源淋巴細胞或外周血的白細胞。


       2.  熒光標記單克隆抗體:常用的有FITC(fluorescein -isothiocyanate)和PE(phycoerythrin)標記的單克隆抗體。


       3.  封閉抗體:抗Fc受體抗體
 
       4.  FACS緩沖液:
       1×PBS  950 ml
       FCS  40 ml
       10%疊氮鈉溶液  10 ml


       5.  儀器緩沖液(FACS-flow):儀器廠(chǎng)家提供


       6.  FACS清潔液(FACS clean )和FACS洗凈液(FACS rinse):儀器廠(chǎng)家提供。


二、操作步驟
 
       1.  單細胞懸液的制備:將1×105~1×107的細胞放入1.5 m l離心管中3000 r/min 離心5分鐘,棄上清;加入FACS緩沖液100 μl 懸浮細胞。


       2.  封閉細胞表面Fc受體:在步驟1中加入Fc受體抗體0.5 μl(0.5 mg/ml),水浴3分鐘。


       3.  細胞與熒光抗體結合:在步驟2中加入熒光抗體1 μl(0.5 mg/ml),水浴30分鐘。


       4.  洗細胞去除游離的熒光抗體:在步驟3中加入FACS緩沖液350 μl,輕輕混勻,3000 r/min,離心5分鐘,棄上清,重復步驟(4)2次。


       5.  上樣前處理:取100 μl 儀器緩沖液加入步驟(4)獲得的細胞沉淀中,輕輕混勻懸浮細胞,將細胞懸液移入FACS專(zhuān)用管中,準備進(jìn)行儀器檢測和分析。


三、儀器的操作


       以FACSCaliburTM(BD Biosciences)儀器為例。儀器主要分為主機部分(包括激光激活源,射流,射線(xiàn)探測器)和計算機部分(CELLQuest softwere)。儀器的操作分為使用前的準備、使用中的操作和使用后的清洗。


1.使用前的準備


       (1)打開(kāi)電源:包括系統電源和主機部分電源。


       (2)檢查供液槽和廢液槽:供液槽應含足夠的儀器緩沖液,廢液槽應在上次使用后清洗干凈。


       (3)使機器處于負亞狀態(tài),才能使細胞懸液被吸入至機器的吸管口。


       (4)機器處于可應用狀態(tài)時(shí),指示燈會(huì )變成綠色。


2.使用中的操作


       (1) 計算機部分—使用CELLQuest程序系統軟件:


       ①設定所要檢測細胞的數量:一般設10 000~20 000個(gè)細胞。


       ②命名本次實(shí)驗:一般含使用者的姓名和實(shí)驗日期。


       ③打開(kāi)記數部分:顯示進(jìn)入的細胞數以及檢測一定量的細胞所需要的時(shí)間。


       ④將微機與主機連接:控制檢測時(shí)的預檢測和實(shí)際檢測。


       ⑤主機設定:一般是已設定好的適合測定淋巴細胞的條件,包括探測器的電壓。探測器的電壓是調空光電倍增管所能檢測熒光密度的范圍。


       ⑥選擇檢測的波長(cháng)和表達方式(plot):如果用一種熒光抗體,一般選直方圖(histogram);如果用兩種熒光抗體,常選點(diǎn)狀二維圖(dot plot)或輪廓線(xiàn)圖(contour plot)表


        CD69分子表達檢測直方圖的數值說(shuō)明
 



 
       b.abti-CD3(2 ng/ml)檢測結果
 


 
       c.abti-CD3(10 ng/ml)檢測結果
 


 
       CD4及CD8細胞點(diǎn)狀二維圖結果
 



 
       不同的熒光物要求選擇不同的激發(fā)波長(cháng),參見(jiàn)下表
 



 
       (2)細胞的吸入:將裝有細胞的FACS測定管放置到機器吸管孔處。
先預檢測樣品,然后進(jìn)行實(shí)際檢測??筛鶕毎臐舛冗x擇測定的速度(低、中或高)。所有的數據將自動(dòng)存入微機。


       3.使用后的清洗  所有樣品測定完后,要進(jìn)行儀器的清洗。


       (1)將裝FACS清潔液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入1分鐘。


       (2)將裝FACS洗凈液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入 1分鐘。


       (3)再將裝FACS清潔液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入5分鐘。


       (4)同樣再將裝FACS洗凈液的FACS管放置機器吸管孔,高速吸入5分鐘。


       (5)最后將一裝有雙蒸水的FACS管放置機器吸管孔后,關(guān)閉機器。


       (6)將廢液槽中的廢液倒掉,并清洗干凈廢液槽。
 
注意事項
       1.  減少非特異熒光染色
       (1)細胞的活性和狀態(tài):流式細胞儀不但可探測細胞表面的熒光,也可探測細胞內的熒光。因此,如果要檢測細胞表面的分子,一定要保證細胞的活性,還應盡可能保持細胞靜止,通常在4度進(jìn)行操作。否則,熒光抗體進(jìn)入死細胞內,會(huì )產(chǎn)生非特異結果。


       (2)封閉抗體的應用是必不可少的,因為大多數的免疫細胞表面都表達有Fc-R。細胞與抗體相互作用后,一定要用FACS緩沖液洗2~3次,以除去游離的抗體。


       2.  單染色時(shí)以FACS最常用,FITC標記抗體熒光比較穩定而且價(jià)格合適。


       3.  如果同時(shí)要檢測兩種以上的分子,一定要選擇不同波長(cháng)的熒光所標記的抗體。
 
      (本文轉載丁香通)
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