編者的話(huà):對一些剛入門(mén)的科研小白們來(lái)說(shuō),免疫組化步驟較為繁瑣,一步錯,則步步錯。也有很多實(shí)驗伙伴向中洪君吐槽,明明覺(jué)得都按照老師們提供的條件做,可惜就是沒(méi)有得到預期結果。今天中洪老司機就教大家這樣做!
1、石蠟切片和冰凍切片的選擇比較
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石蠟切片 |
冷凍切片 |
應用對象 |
廣泛應用常規制片 |
手術(shù)中的快速病理診斷 |
保持時(shí)間 |
持久保存 |
保存時(shí)間較短 |
優(yōu)點(diǎn) |
1、 細胞定位準確 2、 組織細胞形態(tài)結構保存完好, 3、 保存時(shí)可放在室溫下保存 |
1、 簡(jiǎn)便。 2、 快速,用時(shí)短 3、 組織變化不大 4、 能很好的保存脂肪、類(lèi)脂等成分 5、 較好的保存抗原活性及酶類(lèi)。 |
缺點(diǎn) |
1、步驟繁多,制片中抗原活性有所降低 |
1、不易做連續切片 2、切取的組織不能過(guò)大 |
2、一抗的選點(diǎn)和技巧
(1)單克隆和多克隆抗體的選擇。單克隆和多克隆抗體的內在特征決定了它們用于IHC/ICC時(shí)的優(yōu)勢和限制。單克隆抗體由單個(gè)B細胞克隆產(chǎn)生,代表了同質(zhì)群體,能夠高親和力高特異性地與單個(gè)表位結合。這在檢測蛋白家族的某個(gè)成員時(shí)特別有用,因為蛋白家族有著(zhù)高比例的氨基酸同源性。
抗體結合往往依賴(lài)于目標蛋白維持其天然的構想狀態(tài)。與其他蛋白的相互作用、翻譯后修飾、溫度、pH、固定和鹽濃度都會(huì )影響抗體接近目的表位。多克隆抗體是異質(zhì)的,可識別多個(gè)表位,因此它們較少受到蛋白構象變化的影響。
一般而言,多克隆抗體在一定pH和鹽濃度范圍內也比單克隆抗體更為穩定?;谶@些原因,多克隆抗體更常用于IHC/ICC實(shí)驗。
(2)應用范圍的選擇。有的一抗只能用于Western Blotting,或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚至表明石蠟切片或冰凍切片。
(3)種屬反應性的選擇。這一點(diǎn)很重要,表明這種抗體可能存在種屬差異,且這種抗體適合檢測哪種種屬動(dòng)物體內的抗原。
(4)種屬來(lái)源,一般兔來(lái)源的多是多克隆;而小鼠來(lái)源的多是單克隆,但也有另外。根據此來(lái)源來(lái)選擇相應的二抗。
(5)生產(chǎn)廠(chǎng)家的選擇。
3、封閉血清的選擇原則
(1)膜上或切片上有剩余的位點(diǎn)可以非特異性吸附抗體,造成后續結果的假陽(yáng)性。
(2)封閉血清一般是和二抗同一來(lái)源的,血清中動(dòng)物自身的抗體,預先能和組織中有交叉反應的位點(diǎn)發(fā)生結合,否則在后面的步驟中如果和二抗發(fā)生結合,會(huì )造成背景。
(3)也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來(lái)源一致。
4、PBS 的清洗方式選擇、次數和時(shí)間的選擇
(1)單獨沖洗,防止交叉反應造成污染?!?/span>
臨床上每天檢測的病例很多,所用的抗體種類(lèi)及項目也多,如果在加入一抗孵育完后,將它們在一個(gè)缸內洗,這樣就會(huì )造成交叉污染,影響最后的結果。正確的做法是單獨地進(jìn)行沖洗,沖洗的 PBS 為一次性,保證切片沒(méi)有相互交叉污染的機會(huì )。
(2)溫柔沖洗,防止切片的脫落。
沖洗切片,取出切片,將 PBS 從上輕輕地沖洗,讓 PBS 自上而下流下來(lái),不要拿起切片將 PBS 對準切片沖洗,這樣由于沖出的 PBS 有一定的沖擊力,很容易使切片周邊引起松動(dòng),導致切片的脫落。
(3)沖洗的時(shí)間要足夠,才能徹底洗去結合的物質(zhì)。
沖洗切片有人提出用微振蕩器振染,振下未結合的各種物,使之不產(chǎn)生背景,此種做法一是浪費時(shí)間,二是很容易導致切片的脫落。切片的沖洗據實(shí)踐認為,用一小燒杯柔和地于切片上沖洗,就能徹底沖洗去未結合的物質(zhì),無(wú)需附加其它條件,沖洗好于切片上再注入 PBS,持續 2 min 左右就完全足夠了。
5、一抗 4℃ 孵育后為什么要進(jìn)行 37℃復溫?
(1)一方面,防止切片從 4oC 直接放入 PBS 易脫片。
(2)另一方面,使抗原抗體結合更穩定。一般不需要,但對表達較弱的抗原可能有用,4oC 和 37oC 時(shí)分子運動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機率和運動(dòng)速度小于后者,后者結合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。
6、免疫組化結果如何分析
(1)陽(yáng)性著(zhù)色細胞計數法。在 40 * 光鏡下,隨機選擇不重疊的 10 個(gè)視野,人工或機器計數陽(yáng)性著(zhù)色細胞,每組 3-6 張不同動(dòng)物組織切片,然后進(jìn)行組間比較即可。
(2)灰密度分析法。通過(guò)在不同組別和不同動(dòng)物組織切片上選擇相同區域、相同條件下用 image j 進(jìn)行灰密度分析,然后進(jìn)行統計分析即可。
(3)評分法。通過(guò)在光學(xué)顯微鏡下對組織切片分別按染色程度(0-3 分為陰性著(zhù)色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽(yáng)性范圍進(jìn)行評分(1-4 分為 0-25%、26-50%、51-75%、76-100%),最終可以分數相加,再進(jìn)行比較。
對于以上這幾種方法,各有利弊,請細心選擇。要想得到正確結果的前提是你要做出著(zhù)色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。