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當免疫組化撞上難點(diǎn),實(shí)驗老司機教你這樣做!

編者的話(huà):對一些剛入門(mén)的科研小白們來(lái)說(shuō),免疫組化步驟較為繁瑣,一步錯,則步步錯。也有很多實(shí)驗伙伴向中洪君吐槽,明明覺(jué)得都按照老師們提供的條件做,可惜就是沒(méi)有得到預期結果。今天中洪老司機就教大家這樣做!


1、石蠟切片和冰凍切片的選擇比較



石蠟切片

冷凍切片

應用對象

廣泛應用常規制片

手術(shù)中的快速病理診斷

保持時(shí)間

持久保存

保存時(shí)間較短

優(yōu)點(diǎn)

1、 細胞定位準確

2、 組織細胞形態(tài)結構保存完好,

3、 保存時(shí)可放在室溫下保存

1、 簡(jiǎn)便。

2、 快速,用時(shí)短

3、 組織變化不大

4、 能很好的保存脂肪、類(lèi)脂等成分

5、 較好的保存抗原活性及酶類(lèi)。

缺點(diǎn)

1、步驟繁多,制片中抗原活性有所降低

1、不易做連續切片

2、切取的組織不能過(guò)大


2、一抗的選點(diǎn)和技巧


(1)單克隆和多克隆抗體的選擇。單克隆和多克隆抗體的內在特征決定了它們用于IHC/ICC時(shí)的優(yōu)勢和限制。單克隆抗體由單個(gè)B細胞克隆產(chǎn)生,代表了同質(zhì)群體,能夠高親和力高特異性地與單個(gè)表位結合。這在檢測蛋白家族的某個(gè)成員時(shí)特別有用,因為蛋白家族有著(zhù)高比例的氨基酸同源性。

抗體結合往往依賴(lài)于目標蛋白維持其天然的構想狀態(tài)。與其他蛋白的相互作用、翻譯后修飾、溫度、pH、固定和鹽濃度都會(huì )影響抗體接近目的表位。多克隆抗體是異質(zhì)的,可識別多個(gè)表位,因此它們較少受到蛋白構象變化的影響。


一般而言,多克隆抗體在一定pH和鹽濃度范圍內也比單克隆抗體更為穩定?;谶@些原因,多克隆抗體更常用于IHC/ICC實(shí)驗。


(2)應用范圍的選擇。有的一抗只能用于Western Blotting,或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚至表明石蠟切片或冰凍切片。


(3)種屬反應性的選擇。這一點(diǎn)很重要,表明這種抗體可能存在種屬差異,且這種抗體適合檢測哪種種屬動(dòng)物體內的抗原。


(4)種屬來(lái)源,一般兔來(lái)源的多是多克隆;而小鼠來(lái)源的多是單克隆,但也有另外。根據此來(lái)源來(lái)選擇相應的二抗。


(5)生產(chǎn)廠(chǎng)家的選擇。


3、封閉血清的選擇原則


(1)膜上或切片上有剩余的位點(diǎn)可以非特異性吸附抗體,造成后續結果的假陽(yáng)性。


(2)封閉血清一般是和二抗同一來(lái)源的,血清中動(dòng)物自身的抗體,預先能和組織中有交叉反應的位點(diǎn)發(fā)生結合,否則在后面的步驟中如果和二抗發(fā)生結合,會(huì )造成背景。


(3)也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來(lái)源一致。


4、PBS 的清洗方式選擇、次數和時(shí)間的選擇


(1)單獨沖洗,防止交叉反應造成污染?!?/span>


臨床上每天檢測的病例很多,所用的抗體種類(lèi)及項目也多,如果在加入一抗孵育完后,將它們在一個(gè)缸內洗,這樣就會(huì )造成交叉污染,影響最后的結果。正確的做法是單獨地進(jìn)行沖洗,沖洗的 PBS 為一次性,保證切片沒(méi)有相互交叉污染的機會(huì )。


(2)溫柔沖洗,防止切片的脫落。


沖洗切片,取出切片,將 PBS 從上輕輕地沖洗,讓 PBS 自上而下流下來(lái),不要拿起切片將 PBS 對準切片沖洗,這樣由于沖出的 PBS 有一定的沖擊力,很容易使切片周邊引起松動(dòng),導致切片的脫落。


(3)沖洗的時(shí)間要足夠,才能徹底洗去結合的物質(zhì)。


沖洗切片有人提出用微振蕩器振染,振下未結合的各種物,使之不產(chǎn)生背景,此種做法一是浪費時(shí)間,二是很容易導致切片的脫落。切片的沖洗據實(shí)踐認為,用一小燒杯柔和地于切片上沖洗,就能徹底沖洗去未結合的物質(zhì),無(wú)需附加其它條件,沖洗好于切片上再注入 PBS,持續 2 min 左右就完全足夠了。


5、一抗 4℃ 孵育后為什么要進(jìn)行 37℃復溫?


(1)一方面,防止切片從 4oC 直接放入 PBS 易脫片。


(2)另一方面,使抗原抗體結合更穩定。一般不需要,但對表達較弱的抗原可能有用,4oC 和 37oC 時(shí)分子運動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機率和運動(dòng)速度小于后者,后者結合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。


6、免疫組化結果如何分析


(1)陽(yáng)性著(zhù)色細胞計數法。在 40 * 光鏡下,隨機選擇不重疊的 10 個(gè)視野,人工或機器計數陽(yáng)性著(zhù)色細胞,每組 3-6 張不同動(dòng)物組織切片,然后進(jìn)行組間比較即可。


(2)灰密度分析法。通過(guò)在不同組別和不同動(dòng)物組織切片上選擇相同區域、相同條件下用 image j 進(jìn)行灰密度分析,然后進(jìn)行統計分析即可。


(3)評分法。通過(guò)在光學(xué)顯微鏡下對組織切片分別按染色程度(0-3 分為陰性著(zhù)色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽(yáng)性范圍進(jìn)行評分(1-4 分為 0-25%、26-50%、51-75%、76-100%),最終可以分數相加,再進(jìn)行比較。


對于以上這幾種方法,各有利弊,請細心選擇。要想得到正確結果的前提是你要做出著(zhù)色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。

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