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超高效電轉化細胞的制備、電擊及要點(diǎn)——經(jīng)過(guò)實(shí)踐檢驗可靠適用

1.細菌電轉化感受態(tài)細胞的制備

 

1)由-70度冰箱中保存得菌種劃單菌落,過(guò)夜培養16-20hr。晚上將將新鮮的菌落接種于2ml-5mlSOB培養基的試管中,37℃振蕩培養過(guò)夜,轉速控制在180rpm。


2)第二天,取過(guò)夜培養物250uL轉接入含50ml SOB培養基(1:200)的500mL搖瓶中,37℃劇烈振蕩 (300rpm)培養至OD600約為0.72-0.76,將細菌培養物置于冰水混合物中驟冷。


3)用兩個(gè)預冷的50ml離心管于4℃ 2000g離心10分鐘。收集菌體,棄上清。


4)用預冷的水(純凈雙蒸水,高壓蒸汽滅菌)輕輕重懸菌體,先加入少量水重懸菌體,然后把水加滿(mǎn),4℃ 2200g離心10分鐘,棄上清。


5)再用10%甘油重復步驟4)兩次,2400g離心10分鐘,最后一次倒盡上清后,用殘存管底的甘油懸浮細胞,分裝ep管,100ul/支(一般,25ml起始培養物最終用200-250uL10%甘油懸?。?。


6)放入液N2中速凍,保存于-70℃。

 

注意


1) 菌種最好是-70℃凍存的,活化后生長(cháng)狀態(tài)較好。


2) 2ml培養過(guò)夜,震蕩速度不要過(guò)高(一般應該是37度,300rpm,6hr,當天轉接,這樣一天內工作量太大,這里我們選擇過(guò)夜培養,時(shí)間長(cháng),轉速控制在180rpm, 可以適當縮短時(shí)間,前一天晚接種,第二天早轉接)


3) 培養完畢后一定要驟冷,使培養物在短時(shí)間內迅速冷卻。冰水混合物中搖動(dòng)瓶子,大約10分鐘。


4)所使用得器皿一定要非常干凈,沒(méi)有化學(xué)物質(zhì)殘存,可以先用餐洗凈洗,再加入NaOH固體和蒸餾水產(chǎn)熱,最后用蒸餾水反復沖洗干凈。注意pH值檢測。


5)培養完畢后得離心操作一定要低溫,所用的水和甘油,離心管都要冰上預冷。


6)整個(gè)過(guò)程盡量不要用槍吹打。


7)器皿和試劑最好最后用重蒸水涮洗和配制。


8)控制好菌體的OD600值,我用JM109操作時(shí)值為0.727和0.757時(shí)都獲得非常高效的轉化率。而0.83時(shí)轉化率明顯降低。根據季節不同JM109達到相應OD值


所需時(shí)間有所差異2.5hr-3hr45min。


9)最后一次務(wù)必倒盡上清后,用殘存管底的甘油懸浮細胞,一般每管僅剩200uL左右。切務(wù)用過(guò)多甘油液懸浮細胞,我曾用350-500uL10%甘油/25mL出發(fā)菌液,導致細胞濃度下降,電轉效率低2-3個(gè)數量級。

 

2.電轉化protocol1


1) 將電擊杯冰上預冷 ,凍存的感受態(tài)細胞取出冰上融解


2) 30ul感受態(tài)細胞,加入1ul純化的連接液(或者加入0.3-0.5uL未純化的連接液),冰上放置60s-90s


3) 將混合液加入預冷的電擊杯, 注意擦干杯外的水,防止電火花


4) 3kv,200歐姆,25uF(我們用的是BioRad 電轉化儀,0.2電轉化杯),時(shí)間常數應該在4.5-5ms之間(其值越大,說(shuō)明感受態(tài)細胞中離子去除越徹底。) 電擊


5) 加入1ml 37度保溫的SOC,將混和液洗出,此步有熱擊的作用,室溫進(jìn)行


6) 37度震蕩培養1-1.5hr,可適當延長(cháng)時(shí)間,使其充分表達抗性


7) 涂板

 

注意


1) 電擊之前保持低溫狀態(tài)。


2) 連接液要純化,去除離子,ddH2O溶;或者加入0.3-0.5uL未純化的連接液,切務(wù)過(guò)多以免電火花,我曾試過(guò)0.3uL和0.6uL連接液的加入細胞做對比,轉化效率相當。


3) 原核生物受體細胞電擊以15kv/cm 場(chǎng)強為最佳,電擊電壓根據電擊杯厚度選擇


4) 電擊杯使用完,用針頭蒸餾水反復沖洗杯底,再用70%乙醇浸泡,4度存放,使用前烘干即可?;蛘吆娓珊?,-20度冰箱存放。


5)37度震蕩培養時(shí)間切務(wù)過(guò)長(cháng),否則會(huì )有很多的衛星菌落和輕微的菌膜干擾。我曾培養1hr45min即出現上述衛星菌落和輕微的菌膜干擾。

 

試劑配制(重蒸水配制):


SOB:2.0%胰蛋白胨、0.5%酵母浸粉、0.05%NaCl完全溶解攪勻,加入2.5mMKCl 并用NaOH調PH7.0,滅菌后加入過(guò)濾除菌的MgCl2備用;


實(shí)際配制100mL時(shí):2g bacto-trptone、0.5g bacto-yeast extract、0.05g NaCl完全溶加0.0186g KCl,10N NaOH一小滴即可調至PH7.0 分裝入50mL培養基/500mL瓶高壓滅菌;此后50mL中加入250uL 2M MgCl2即為SOB培養基;


SOC:50mL無(wú)菌SOB培養基+1mL 1M 過(guò)濾除菌的葡萄糖即為SOC,分裝1mL每管,凍存于-20備用。


10%甘油:用分子生物學(xué)級別的甘油。

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