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細胞轉移相關(guān)研究方法

1 劃痕

       腫瘤細胞在體外仍具有遷移的能力,本實(shí)驗借鑒體外細胞致傷愈合實(shí)驗模型,利用細胞劃痕法測定了腫瘤細胞的運動(dòng)特性。


實(shí)驗方法:

       將細胞密度為5~10×105個(gè)/mL的XXX細胞鋪于24孔板(每孔500 μL)上,加入含10%胎牛血清的RMPI.1640培養液,培養16~24h,使形成單層細胞。用10μL移液槍槍頭(或者無(wú)菌牙簽)在單層細胞上呈“一”字劃痕,用PBS清洗3次,孵育24h后換成含10%胎牛血清的RMPI.1640培養液,孵育24h。觀(guān)察并拍照:吸去培養液,用PBS清洗3次后,在倒置熒光顯微鏡下觀(guān)察并拍照。

2 細胞粘附

       細胞粘附實(shí)驗通常分為兩類(lèi),即細胞與細胞粘附和細胞與基質(zhì)粘附。機體內許多細胞,如上皮細胞固定在某處發(fā)揮功能;另一些細胞,如白細胞,活躍運動(dòng),就需要不斷調節細胞粘附。細胞粘附性的改變在腫瘤轉移過(guò)程中也發(fā)揮著(zhù)重要作用。惡性腫瘤具有從原發(fā)瘤分離及在體內擴散的能力,提示這些細胞相互識別及粘附機制發(fā)生了改變。


實(shí)驗方法:


       用10 μg/mL的纖連蛋白(fibronectin,FN)預鋪96孔板,70 μL/孔,4℃過(guò)夜后,PBS洗3遍,再用1% BSA于37℃封閉1h,PBS洗3遍。將待測XXX細胞培養至對數生長(cháng)期,消化細胞,用無(wú)血清培養基懸浮細胞,調整濃度為5×105/mL分別接種于預鋪FN的96孔板中,每孔5000個(gè)細胞,每組設3個(gè)復孔。37℃孵育1h后,PBS洗去未黏附的細胞。


檢測方法1:

       3.5%戊二醛于4℃固定0.5h,PBS洗3遍;0.1%的結晶紫染色,室溫靜止0.5h,PBS洗3遍,每孔加入100 μL 10%的乙酸,5~10min后用酶標儀檢測595nm的吸光度值,用以表示黏附細胞的多少。

檢測方法2:按照每孔加入100μL甲醇,固定15 min每孔加入100 μL吉姆薩染液,染色15min,PBS洗去染液倒置顯微鏡下隨機取5個(gè)隨機視野計數粘附細胞數量病拍照,統計結果。

檢測方法3:MTT法或CCK-8檢測細胞量。


3 Transwell遷移

       細胞遷移實(shí)驗將Transwell小室放入培養板中,小室內稱(chēng)上室,培養板內稱(chēng)下室,上下層培養液以聚碳酸酯膜相隔,將研究的XXX細胞種在上室內,由于聚碳酸酯膜有通透性,下層培養液中的成分可以影響到上室內的細胞,應用不同孔徑和經(jīng)過(guò)不同處理的聚碳酸酯膜,就可以進(jìn)行共培養、細胞趨化、細胞遷移、細胞侵襲等多種方面的研究。


實(shí)驗方法:


       所有細胞培養試劑和Transwellchamber放在37℃溫育。待測XXX細胞培養至對數生長(cháng)期,消化細胞,用PBS和無(wú)血清培養基先后洗滌一次,用無(wú)血清培養基懸浮細胞,計數,調整濃度為2×105/mL。在下室(即24孔板底部)加入600-800μL10%血清的培養基,上室加入100-150μL細胞懸液,繼續在孵箱培養24小時(shí)。用鑷子小心取出chamber,吸干上室液體,移到預先加入約800μL甲醇的孔中,室溫固定30 min。取出chamber,吸干上室固定液,移到預先加入約800μL Giemsa染液的孔中,室溫染色15-30 min。輕輕用清水沖洗浸泡數次,取出chamber,吸去上室液體,用濕棉棒小心擦去上室底部膜表面上的細胞。用小鑷子小心揭下膜,底面朝上晾干,移至載玻片上用中性樹(shù)膠封片。顯微鏡下取9個(gè)隨機視野計數,統計結果。

4 Transwell侵襲

       所謂Transwell侵襲實(shí)驗,其實(shí)是指將Transwell這一技術(shù)應用于腫瘤細胞侵襲研究的一種實(shí)驗。


實(shí)驗方法:


       基質(zhì)膠準備:將凍存于-80℃冰箱的BD matrigel 4℃過(guò)夜(24h),變成液態(tài)。取300μL無(wú)血清培養基,加入60μL(或50μg/每室)Matrigel,4℃混勻,加入上室各100μL3個(gè)室),放入37℃培養箱中,孵育4-5h。當出現“白色層”時(shí),說(shuō)明已經(jīng)變?yōu)楣虘B(tài)。消化XXX細胞,無(wú)血清培養基洗3次,計數,配成細胞懸液。用無(wú)血清培養基洗Matrigel洗1次,每孔加入100μL細胞懸液。下腔室中加入500μL含有20%FBS條件培養基。37℃培養箱中,孵育20-24h。取出transwell用PBS洗2次,5%戊二醛4℃固定。加入0.1%結晶紫染色或Giemsa染色,室溫染色5-10min,0.5h,PBS洗2次,用棉球擦去上表面細胞,顯微鏡下取9個(gè)隨機視野計數,統計結果。

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