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慢病毒感染方法

材料和試劑

   1. 6 cm細胞培養皿(Fiosher).

   2. 人類(lèi)或小鼠細胞系,細胞試驗所需要的生長(cháng)培養基。

   3. 凝聚胺(海美溴銨; Sigma H 9268)

  4. 合適的選擇性抗生素。

儀器

   1. 細胞培養箱

步驟

   慢病毒感染方法應該根據不同的細胞系和以細胞為基礎的試驗來(lái)進(jìn)行優(yōu)化。例如,下列的參數應該在大規模的感染之前進(jìn)行優(yōu)化,以確定一個(gè)實(shí)驗的最適條件:

   1) 細胞種植密度

   2) 慢病毒的數量

   3) 嘌呤霉素的濃度

   4) 感染時(shí)間

2. 在6cm培養皿中種植適當密度的細胞,每孔體積6ml。

   1) 貼壁細胞:轉染前1天種植細胞

   2) 懸浮細胞:轉染當天種植細胞,培養基中需要含有凝聚胺。

3. 細胞中加入病毒:

   1) (貼壁細胞):棄掉培養基,加入新鮮的含有凝聚胺的培養基 ?;蛘?,棄掉部分培養基并且補充含有凝聚胺的培養基。調整體積和凝聚胺的濃度,使得凝聚胺的終濃度為8ug/ml。

4. 病毒感染:

   1) 孵育細胞過(guò)夜。

   2) 感染后24h更換培養基。棄掉培養基,換入6ml新鮮的培養基。如果需要抗生素選擇,則使用含有抗生素的新鮮培養基。

   注意:嘌呤霉素的濃度應該根據每種細胞系來(lái)進(jìn)行優(yōu)化;常用的濃度范圍為: 2-5 μg/mL.

5. 孵育細胞,根據需要每隔幾天更換培養基(如果需要,則要含有抗生素) 。孵育時(shí)間的長(cháng)短主要依賴(lài)于感染后的試驗。
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