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蛋白質(zhì)定量/蛋白質(zhì)含量的測定(LOWRY法)

實(shí)驗概要 運用LOWRY法測定蛋白質(zhì)的含量。
實(shí)驗原理
       Lowry法是雙縮脲法和福林酚法的結合與發(fā)展,其原理是:蛋白質(zhì)溶液用堿性銅溶液處理,形成銅-蛋白質(zhì)的絡(luò )合鹽,再加入酚試劑后,除使肽鏈中酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸等顯色外,還使雙縮脲法中肽鍵、堿性銅的顯色效果更強烈。因此,Lowry法的顯色效果比單獨使用酚試劑強烈3~15倍,為雙縮脲法100倍。由于肽鍵顯色效果增強,從而減小了因蛋白質(zhì)種類(lèi)引起的偏差。

       Lowry法的試劑由兩部分組成,試劑甲相當于雙縮脲試劑(堿性銅溶液),可與蛋白質(zhì)中的肽鍵起顯色反應;試劑乙為磷鎢酸和磷鉬酸混合液,在堿性條件下極不穩定,易被酚類(lèi)化合物還原生成鉬藍和鎢藍混合物而呈藍色反應,因此蛋白質(zhì)的酪氨酸和胱氨酸等可顯色,顏色深淺與蛋白質(zhì)含量成正比。

主要試劑
       Na2WO4?2H2O;Na2MoO4?2H2O;85% H3PO4;濃HCl;Li2SO4?H2O;溴水;酚酞指示劑;Na2CO3;NaOH;CuSO4?5H2O;酒石酸鉀鈉;

       牛血清白蛋白:用水配成250mg/ml。

主要設備

       試管若干;刻度吸管0.5ml,1ml,10ml;定量加樣器;圓底燒瓶;冷凝管一套(帶橡膠管);微量滴定管;小燒杯;微量進(jìn)樣器50μl;分光光度計。


實(shí)驗材料

       可溶性蛋白質(zhì)


實(shí)驗步驟
      1. 酚試劑的制備
     (1)取Na2WO4?2H2O 100g,Na2MoO4?2H2O 25g 及蒸餾水700ml于1500ml的圓底燒瓶中,之后加入85% H3PO4 50ml,濃HCl 100ml。安上回流冷卻裝置(使用磨口接頭。用軟木塞或橡皮塞時(shí),必須用錫泊包起來(lái)),使其慢慢沸騰10h。冷卻后加入Li2SO4?H2O 150g,水50ml,濃HCl 100ml安上回流冷卻裝置,開(kāi)口加熱煮沸15min,以逐出過(guò)量的溴。冷卻后稀釋至100ml,并過(guò)濾入棕色瓶中,密閉于冰箱中保存。
使用時(shí)用標準NaOH溶液滴定,以酚酞為指示劑。滴定終點(diǎn)由藍變灰。滴定后算出酸濃度,用時(shí)適量稀釋?zhuān)棺詈鬂舛葹?mol/L H+,此為Folin-酚試劑乙液。

     (2)首先配制①4% Na2CO3溶液;②0.2mol/L NaOH溶液;③1% CuSO4溶液;④2%酒后石酸鉀鈉溶液;使用前①與②等體積混合配成Na2CO3-NaOH溶液;將③與④等體積混合配成硫酸銅一酒石酸鉀鈉溶液。然后將這兩個(gè)溶液按50︰1混合;配成Folin-酚試劑甲液。此試劑只能用一天。

2. 標準曲線(xiàn)的繪制
      (1)取7只試管編號,分別加0ml,0.1ml,0.2ml,0.4ml,O.6ml,0.8ml,1.0ml標準蛋白質(zhì)溶液,用水補到1ml,便成為每管含蛋白為0mg,25mg,50mg,100mg,150mg,200mg,250mg標準系列(必要時(shí)可做重復)。
      (2)加5ml試劑甲,混勻,于30℃放置10min。
      (3)噴射加入0.5ml試劑乙,立即振蕩混勻,在30℃下保溫30min。
      (4)準確到30分后,以不加標準蛋白的管為空白,在500nm波長(cháng)下比色測定吸光度值。
      (5)以蛋白濃度為橫坐標,吸光度值為縱坐標,繪制標準曲線(xiàn)。

3. 樣品測定
      (1)取50μl樣液加入試管中,(樣液提取一般按0.1g鮮樣/ml比例,提取方法見(jiàn)各酶活測定)加蒸餾水補至1ml,然后重復步驟2的(2),(3),(4),以空白為參比,測吸光度值。
      (2)根據吸光度值,查標準曲線(xiàn)求得蛋白質(zhì)含量。


4. 結果計算
       蛋白質(zhì)含量(mg/g鮮重)= (C*V/a)/W式中 C-查標準曲線(xiàn)得樣品測定管中蛋白質(zhì)含量(mg);
       V-提取液總量(ml);
       a-測定時(shí)取樣液量(ml);
       W-取樣量(g)。

注意事項
       1. Folin試劑乙只在酸性條件穩定,故當其加到堿性的銅-蛋白質(zhì)溶液中時(shí),必須立即混勻,以便在磷鉬酸-磷鎢酸試劑被破壞前,還原反應即能發(fā)生。
       2. 為了保證反應進(jìn)行完全,反應在25~30℃水浴中進(jìn)行,反應30min后準時(shí)比色。
       3. 還原物質(zhì)干擾本實(shí)驗。


       考馬斯亮藍法和LOWRY法兩種方法均是靈敏度為微克級的高靈敏度定量測定蛋白質(zhì)方法,前者穩定,后者簡(jiǎn)便;二者均優(yōu)于現有的其它方法。


二者的缺點(diǎn)是:

       1. Lowry法受植物體內存在的酚類(lèi)物質(zhì)干擾;

       2. 考馬斯亮藍法在蛋白質(zhì)含量很高時(shí)線(xiàn)性關(guān)系稍偏低,且不同蛋白質(zhì)與色素結合狀況有差異。


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